Peroxidase aus Meerrettich

Horseradish peroxidase (HRP) wird aus Meerrettich (Amoracia rusticana) Wurzeln isoliert und ist innerhalb der Peroxidasen der Gruppe der Ferroprotoporpyhrine zuzuordnen. HRP besteht aus einer einzelnen Polypeptidkette und entält vier Disulfidbrücken. Sie ist ein Glykoprotein mit einem Kohlenhydratanteil von 18%. Der Kohlenhydratanteil besteht aus Galactose, Arabinose, Xylose, Fucose, Mannose, Mannosamin und Galactosamin - in Mengenverhältnissen abhängig vom Isoenzym. Ihr Molekulargewicht (~44 kDa) setzt sich aus der Polypeptidkette (33,890 Daltons), dem Hemin plus Ca²⁺ (~700 Daltons) und der Glykosylierung (~9,400 Daltons) zusammen. Es existieren zumindest sieben Isoenzyme von HRP. Der isoelektrische Punkt von HRP ist in einem Bereich von pH 3 3.0 - 9.0.

Das Enzym diente zur Entwicklung eines thermostabilen, auf Sojabohnen-Peroxidase basierenden Biosensors durch Vernetzung und elektrische ′Verbindung′ des Enzyms mit einer Glaskohlenstoff-Elektrode durch ein redox-leitendes Hydrogel. Es wurde auch zur Untersuchung der Oxidation von Lipoprotein niederer Dichte verwendet.

Meerrettichperoxidase (HRP) wird aus Meerrettichwurzeln (Amoracia rusticana) isoliert und gehört zur Ferroprotoporphyringruppe der Peroxidasen. Sie wird in biochemischen Anwendungen wie Western Blots, ELISA und Immunhistochemie eingesetzt. Meerrettichperoxidase wird zur Amplifikation eines schwachen Signals und zur Steigerung der Nachweisbarkeit eines Zielmoleküls, z. B. eines Proteins, verwendet. Produkt P8375, Typ VI ist ein im Wesentlichen salzfreies, lyophilisiertes Pulver. Sie wird häufig zur Bestimmung der Mengen von Glucose und Peroxiden in Lösung verwendet. Sie wurde zur Untersuchung des sensorischen Inputs der Neuronen des zervikalen Rückenmarks eingesetzt.

HRP kann leicht mit Wasserstoffperoxid (H₂O₂) kombiniert werden, und der resultierende [HRP-H₂O₂]-Komplex kann ein breites Spektrum an Wasserstoffdonatoren oxidieren. Der optimale pH-Wert beträgt 6,0–6,5 und das Enzym ist bei einem pH-Wert im Bereich von 5,0–9,0 am stabilsten. HRP kann durch verschiedene Verfahren an Antikörper konjugiert werden, einschließlich durch Glutaraldehyd, Periodatoxidation, Disulfidbindungen und Amino- oder Thiol-gerichtete Vernetzungsmittel. Sie ist kleiner und stabiler als die Enzymmarkierungen β-Galactosidase und alkalische Phosphatase, wodurch sie die begehrteste Markierung ist. Ihre Glykosylierung führt auch zu einer geringeren nichtspezifischen Bindung.

Wenn Meerrettichperoxidase mit einem Substrat inkubiert wird, erzeugt sie ein farbiges, fluorimetrisches oder lumineszierendes Derivat des markierten Moleküls, wodurch die Quantifizierung ermöglicht wird. Meerrettichperoxidase verringert das Maß der Hemmung in einem mutierten cydAB leicht. Bekannte Inhibitoren sind Natriumazid, Cyanid, L-Cystein, Dichromat, Ethylenthioharnstoff, Hydroxylamin, Sulfid, Vanadat, p-Aminobenzoesäure sowie die Ionen Cd²⁺, Co²⁺, Cu²⁺, Fe³⁺, Mn²⁺, Ni²⁺ und Pb²⁺.

Eine Pyrogalloleinheit bildet in 20 s bei einem pH-Wert von 6,0 und 20 °C 1 mg Purpurogallin aus Pyrogallol.

Die RZ (Reinheitszahl) ist das Absorptionsratio A₄₀₃/A₂₇₅ bestimmt bei 0.5-1.0 mg/ml in deionisiertem Wasser. Es ist ein Mass für den Hämingehalt, nicht für die Enzymaktivität. Selbst Zubereitungen mit hoher RZ können eine tiefe Enzymaktivität haben.

Weitere Informationen über Peroxidase finden Sie unter www.sigma-aldrich.com/enzymeexplorer.